биотехнология для чайников фитокамера для растительных культур, фотография любезно предоставлена Н.В. Пликиной
биотехнология составы и приготовление питательных сред культивирование клеток тесты по биотехнологии

Культивирование фибробластов человека

Культуральная посуда и оборудование: пипетки мерные от 1 до 10 мл, пипетки Пастера, пенициллиновые флаконы, пробирки Лейтона, мерные флаконы от среды разных объемов, пробки резиновые N 10, 12.5, 14.5, 24; стекла покровные для микроскопии, предварительно нарезанные для помещения их в пенициллиновые флаконы, пинцеты глазные анатомические и хирургические, зажим Кохера, бритва безопасная, препаровальная игла из нержавеющей стали, резиновая груша для работы с пипетками (с надетой резиновой трубкой), инвертированный микроскоп, ламинар-бокс, термостат.

Питательная среда для культивирования фибробластов:

Фибробласты успешно культивируют на разных средах, но рекомендуется использовать следующий состав питательной среды - среда Игла  - 90-85%, сыворотка крупного рогатого скота - 5-10%, пуповинная сыворотка человека (фетальная сыворотка) - 5%, глютамин - 150 мг на 500 мл готовой среды. Готовую среду и её компоненты рекомендуется хранить при 4оС.
Пуповинную сыворотку (если нет готовой) можно приготовить следующим образом: собрать кровь в родильном отделении (стерильные флаконы подставляют под отрезанный конец пуповины до рождения плаценты), хранить в холодильнике до образования сгустка. После этого сыворотку сливают в центрифужные стаканы и центрифугируют при 500 g 2 раза по 20 мин, осветляют путем фильтрации через мембранные фильтры последовательно диа-метром пор 0.85, 0.4, 0.3, 0.22 мкм, последняя фильтрация - стерилизующая, и проводится в стерильных условиях. Стерильность полученной сыворотки проверяют посевом на агар. При культивировании эксплантов рекомендуется использовать антибиотики (40-60 мкг канамицина на 1 литр среды).

Ход работы:

1. Взятие биопсии. Фибробласты можно получать из многих тканей и органов. Проще всего - фибробласты дермального слоя кожи. Наиболее удобно брать биопсию со внутренней стороны предплечья левой руки (нижняя треть). Кожу дезинфицируют 70% этиловым спиртом. Не рекомендуется употреблять другие дезинфицирующие растворы, так как в случае проникновения в биопат они могут оказать токсическое действие. После дезинфекции кожу захватывают глазным хирургическим пинцетом, оттягивают и отрезают кусочек кожи непосредственно под браншами пинцета. Не следует стремиться взять глубокие слои кожи. При правильно взятой биопсии, захватывающей эпидермис и сосочковый слой кожи, кровотечение минимально. Отсечение лучше проводить лезвием безопасной бритвы, простерилизованной (как и пинцет) путем погружения в этиловый спирт с последующим поджиганием. Отсеченный кусочек погружается в заранее приготовленный пенициллиновый флакон со средой. На рану накладывают бактерицидный пластырь. Фрагмент кожи может храниться в питательной среде при 4оС в течение 3-4 суток без утраты фибробластами способности к росту.

2. Получение экспланта. В стерильную чашку Петри с каплей 0.25% раствора трипсина или питательной среды помещают фрагмент кожи. Придерживая пинцетом, нарезают на мелкие кусочки величиной с булавочную головку и меньше стерильным лезвием безопасной бритвы, зажатой в зажим Кохера или Пеана. При помощи изогнутой препаровальной иглы кусочки извлекают из капли и помещают на покровное стекло, находящееся в пенициллиновом флаконе или пробирке Лейтона. Уложенные кусочки накрывают другим покровным стеклом, слегка прижимая препаровальной иглой. Наливают в культуральный сосуд питательную среду так, чтобы она покрыла верхнее стекло. Покровные стекла с зажатыми между ними кусочками кожи при помощи пинцета кладут на боковую стенку пенициллинового флакона. Флаконы плотно закрывают пробкой и устанавливают на подставке под углом примерно в 30о. Культуры инкубируют в термостате при 37оС. В течение недели следят за цветом среды. Изменение цвета индикатора к желто-оранжевому свидетельствует о хорошем состоянии экспланта.
Через неделю ежедневно начинают просматривать культуру под микроскопом. Можно использовать как инвертированный, так и обычный микроскоп. В последнем случае следует осторожно повернуть флакон, при этом стекла с культурой прилипают к боковой стенке флакона и могут быть исследованы при малом увеличении. Вокруг кусочков вначале появляются единичные фибробласты, которые заметны в виде длинных веретеновидных клеток, либо появляется слой эпителия, окружающий фрагмент в виде “кружевного” ореола. При появлении зоны выроста клеток следует сменить среду. Когда клетки займут все пространство между кусочками (это видно невооруженным глазом или при помощи лупы), их пересевают. 



отправить письмо © Н.А. Кузьмина 2006-2009